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特異性抗原誘導的細胞毒性T細胞功能測定

發表時間:2017-05-09

特異性抗原誘導的細胞毒性T細胞功能測定

一、基本原理

本方法先借助長期混合淋巴細胞培養法獲得抗原特異性CTL,然后再進行細胞毒試驗。其原理為:外周血淋巴細胞包含針對不同抗原的特異性CTL克隆,在體外經某一特定(或同種異體細胞)抗原刺激后,能識別該抗原的T細胞克隆被選擇性激活、增殖,而其他T細胞克隆則逐漸死亡;經3~4次刺激后,存活的均為識別特異性MHC/抗原肽復合物的細胞,即抗原特異性CTL 。

二、試劑及材料

1. 絲裂霉素C(Sigma):用培養液或PBS配制300μg/ml。

2. 含20%的新生牛血清的RPMI 1640

3. EB病毒轉化的B淋巴母細胞株

三、操作方法

1. 特異性CTL的誘導和制備

①  取作者外周血分離PBMC,無血清1640洗兩遍,用含20%的新生牛血清的RPMI 1640調成1.5×106 /ml,置于24孔板中,于5% CO2 培養箱中4小時使單核細胞貼壁以去除之,然后收集細胞,計數;

②  取EB病毒轉化的B淋巴母細胞,加入絲裂霉素C,最終濃度為30μg/ml,于37℃水浴中作用30min,1000r/min離心10min,棄上清,沉淀細胞用1640液洗滌3次并計數;

③  取2×106 個PBL于24孔板中,加入5×104 (2.5%)個經絲裂霉素C處理(30mg/ml、30min)的自身、同種異體(其HLA-I類型別完全不同)的EBV-LCL細胞作為刺激細胞,混勻,用完全培養基(RPMI 1640)補總體積至2ml;

④  靜置于培養箱中;4d后半量換液,繼續培養3d;

⑤  離心收集細胞,取1×106 個反應細胞,加入2×105個(20%)的刺激細胞,第三天加入重組IL-2,使終濃度為30U/ml;每三天半量換液一次并維持相同IL-2濃度。

⑥  每周按相同程序刺激效應細胞一次,3~4次后,效應細胞即為特異性CTL,可用于殺傷實驗。

2. 細胞毒試驗

檢測CTL細胞毒作用均可采用檢測NK細胞殺傷活性的方法,僅效靶細胞比例不一樣,現將LDH釋放法簡要敘述如下:

①  靶細胞為用作刺激細胞的自身或同種異體EBV-LCL細胞,調成1×105/ml;

②  效應細胞為上述誘導的特異性CTL,調成2.5×106/ml;

③  各取0.1ml于96孔板中(效/靶比值為25:1);輕輕吹打,使二者混勻;同時設靶細胞自然釋放對照組(即只加靶細胞而不加效應細胞)和最大釋放對照組(0.1ml靶細胞和0.1ml 1% NP-40);

④  1000rpm/min離心2min后,置37°C、5% CO2 培養箱中孵育4hr

⑤  酶促顯色反應:參見“NK細胞殺傷實驗”。


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